Ugrožena vitalnost zubnih stanica nakon izlaganja izbjeljivanju zuba

Ova je studija imala za cilj procijeniti održivost zubnih stanica nakon vremenski ovisnih tretmana izbjeljivanja zubi karbamid peroksidom korištenjem in vitro modela testa perfuzije dentina. 30 zuba bilo je izloženo 5-postotnom ili 16-postotnom CP gelu (4 h dnevno) tijekom 2 tjedna. Organski sadržaj cakline mjeren je termogravimetrijom. Istraživana je vremenski ovisna održivost matičnih stanica ljudske zubne pulpe (HDPSC) i stanica fibroblasta gingive (HGFC) nakon neizravnog izlaganja 3 komercijalno dostupne koncentracije CP gela korištenjem in vitro testa perfuzije dentina ili izravnog izlaganja 5 posto H2O2. procjenom promjene morfologije stanica i hemocitometrijom. CP od 5 posto i 16 posto proizveli su znatno niži (str< 0.001) enamel protein content (by weight) when compared to the control. The organic content in enamel varied accordingly to the CP treatment: for the 16% and 5% CP treatment groups, a variation of 4.0% and 5.4%, respectively, was observed with no significant difference. The cell viability of HDPSCs decreased exponentially over time for all groups. Within the limitation of this in-vitro study, we conclude that even low concentrations of H2O2 and CP result in a deleterious change in enamel protein content and compromise the viability of HGFCs and HDPSCs. These effects should be observed in-vivo.

Prema relevantnim studijama,cistancheje uobičajena biljka koja je poznata kao "čudotvorna biljka koja produžuje život". Njegova glavna komponenta jecistanozid, koji ima različite učinke kao nprantioksidans, protuupalno i promicanje imunološke funkcije. Mehanizam između cistanhe ikožaizbjeljivanjeleži u antioksidativnom učinku cistanheglikozidi. Melanin u ljudskoj koži nastaje oksidacijom tirozina koju kataliziratirozinaza, a reakcija oksidacije zahtijeva sudjelovanje kisika, pa radikali bez kisika u tijelu postaju važan čimbenikutječućimelaninproizvodnja. Cistanche sadrži cistanozid, koji je antioksidans i može smanjiti stvaranje slobodnih radikala u tijelu, stogainhibiranje proizvodnje melanina.

cistanche bienfaits

Kliknite na Cistanche Tubulosa dodatak za izbjeljivanje

Za više informacija:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Potraga za izbjeljivanjem zubi odražava zahtjeve pacijenata za vrhunskom estetikom i značajan napredak u sredstvima i tehnikama za izbjeljivanje zubi. Iako se ovaj postupak rutinski provodi za poboljšanje estetike osmijeha, ostaju dva uobičajena štetna učinka prijavljena in vivo nakon vitalnih terapija izbjeljivanja zuba: iritacija gingive1 i postoperativna osjetljivost2. Oba ova štetna učinka izravno su povezana s nusproduktima koji se oslobađaju razgradnjom aktiviranih gelova za izbjeljivanje3,4. Karbamid peroksid (CP) jedan je od najčešće korištenih tretmana za vitalno kućno izbjeljivanje zubi. CP (CO(NH2) H2O2) je organski, bijel i kristalan, a razložit će se na vodikov peroksid (H2O2) i ureu5,6. H2O2 ima nisku molekularnu težinu i veliku oksidativnu moć, što pogoduje njegovoj brzoj difuziji u caklinske prizme i međuprizmatske prostore7. H2O2 može disocirati u vodu, reaktivni kisik i vrste slobodnih radikala, kao što su hidroksilni radikali (OH−). U zubu se smatra da "reakciju izbjeljivanja" izvode slobodni radikali izvedeni iz H2O2- koji razgrađuju velike dentinske kromogene molekule (kromofore) u manje molekule sa slabijim ili neapsorpcijskim optičkim svojstvima, slika 18, 9. Nažalost, H2O2 ne ostaje ograničen na dentin i može doći do pulpne komore uglavnom difuzijom kroz dentinske tubule. Pretpostavlja se da će po dolasku u pulpu H2O2 dovesti do smanjenja stanične proliferacije, metabolizma i sposobnosti preživljavanja10, smanjenja reparativnog kapaciteta pulpe11, nekroze tkiva12 i konačno izazivanja pulpne boli13. Prvo izvješće sugeriralo je da u niskim koncentracijama sredstva za izbjeljivanje nisu štetna za zubne strukture14. Ipak, postoji sve više in vitro dokaza da se pri niskoj koncentraciji (5 posto i 10 posto ) CP-a, štetni učinak slobodnih radikala izvedenih iz H2O2- može otkriti u cijelom dentinu i preko komore pulpe5,15 . Iako uporaba sredstava i tehnika za izbjeljivanje zubi postaje sve popularnija, do danas u znanstvenoj literaturi nema studija koje su istraživale mogući štetan učinak slobodnih radikala izvedenih iz H2O2-izravno na zubne stanice. Izvođenje takvih eksperimenata izravno na pacijentima ugrozilo bi vitalnost samog zuba jer bi bio potreban pristup tkivu pulpe. Uzimajući u obzir prirodnu funkciju matičnih stanica zubne pulpe u proizvodnji odontoblasta za stvaranje reparativnog dentina i za samu pulpu da podržava vitalnost cijelog zuba, ipak je kritično procijeniti kako ti nusproizvodi utječu na populaciju takvog zuba. kritični rezervoar matičnih stanica. Ova in vitro studija ima za cilj procijeniti utjecaj izloženosti različitim koncentracijama uobičajeno korištenih kućnih izbjeljivača zubi na bazi peroksida na zubne stanice (HDPSC i HGFC) izravno ili neizravno pomoću modela perfuzijskog diska dentina.

where can i buy cistanche

Materijali i metode

Sredstva za izbjeljivanje zubi.Komercijalni gelovi za izbjeljivanje zuba s karbamid peroksidom (CP) koncentracije 5 posto, 10 posto, 16 posto i 35 posto dobiveni su izravno od proizvođača (autori se zahvaljuju na donaciji komercijalnog izbjeljivača zuba s karbamid peroksidom (CP) gelovi izravno od proizvođača). Kemijski sastav CP gela bio je voda (Aqua), glicerin, karbomer (natrijeva sol), vodikov peroksid, natrijev tripolifosfat, urea, kalijev nitrat, natrijev fluorid i aroma. Titrirana 5-postotna otopina vodikovog peroksida (SIGMA-ALDRICH, SAD) također je korištena kao kontrola za ispitivanje fibroblasta gingive.

Uzimanje uzoraka zuba.Ukupno 64 netaknuta ljudska pretkutnjaka i treći molari izvađeni iz ortodontskih razloga (dobna skupina 14-21) prikupljena su za ovu studiju prema etičkom odobrenju (broj studije 1703) od UCL Eastman BioBank (12/YH/0111). Informirani pristanak je zatražen od pacijenata i/ili roditelja pacijenata mlađih od 18 godina za svaki zub korišten u ovoj studiji. Sve eksperimentalne protokole korištene u ovoj studiji odobrio je University College London Eastman BioBank (12/YH/0111).

desert cistanche benefits

Nakon vađenja, zubi su prvo pohranjeni u 70 postotnoj otopini etanola do 5 dana na sobnoj temperaturi prije nego što su očišćeni od preostalih mekih tkiva i na kraju pohranjeni u 0,1 postotnoj otopini timola na 4 stupnja dok nije bilo potrebno za studija (čuvanje nije dulje od 2 mjeseca) (Sl. 2a-i).

Sve su metode provedene u skladu s relevantnim lokalnim smjernicama i propisima i Sveučilišta u Londonu (UK) i Sveučilišta u Torontu (Kanada).

Priprema uzorka za analizu omjera cakline i proteina (težine).Trideset zuba nasumično je dodijeljeno kontrolnoj i dvije tretirane skupine (N{{0}}/skupina). Snaga ove studije postavljena je na 80 posto s p-vrijednošću od 0.05 procjenom potrebne dovoljne veličine uzorka u pilot studiji. Visoka (16 posto ) i niska (5 posto ) koncentracija CP odabrana je za praćenje kućnog izbjeljivanja zubi prema preporuci Vijeća europskih stomatologa (CED-DOC-2012-061-E smjernice iz kolovoza 2012.). Zubi su bili izloženi 5-postotnom ili 16-postotnom CP gelu 4 sata dnevno tijekom 2 tjedna i držani su u umjetnoj slini između tretmana. Kontrolna skupina držana je u umjetnoj slini tijekom istog razdoblja. Peroksidni gel je homogeno raspoređen u pojedinačnu termoplastičnu vakumiranu (bez razmaka) ladicu za svaki zub, a višak je uklonjen prema preporuci proizvođača. Iako se zubi razlikuju po veličini, osiguravamo da je kruna svakog zuba u potpunosti uronjena u CP gel za vrijeme trajanja tretmana. Umjetna slina pripremljena je korištenjem sastojaka koje su opisali McKnight-Hanes i Whitford16 (tablica 1) i držana na 4 stupnja nakon pripreme. Nakon tretmana, svaki je zub uzdužno presječen na bukalnu i lingvalnu polovicu (Slika 2a-ii) s kojih su potpuno uklonjeni dentin, pulpa i EDJ pomoću dijamantnih svrdla i svrdla od nehrđajućeg čelika u brzom turbinskom nasadniku. Preostala caklinska ljuska (debljine 0,3–0,5 mm) očišćena je u ultrazvučnoj deioniziranoj vodi 30 s (Sl. 2a-iii). Ljuske cakline su zatim usitnjene u fini prah za termogravimetrijsko testiranje korištenjem "Spartan, Vibratory Sieve Shaker" (FRITSCH GMBH, NJEMAČKA) (Sl. 2a-iv).

cistanche norge

cistanche nedir

Analiza omjera cakline i proteina (težine) prije i poslije izbjeljivanja.Termogravimetrijska analiza (TGA) provedena je pomoću analizatora TGA 50 (SHIMADZU CORPORATION, JAPAN). Svaki uzorak sastojao se od (400±0,25) mg cakline u prahu stavljene u platinasti lončić. Ciklus TGA je pokrenut između sobne temperature i 800 stupnjeva, brzinom od 10 stupnjeva/min sa 1-minutnim zadržavanjem na 30 stupnjeva. Mjerenja su provedena pod kisikom (50 ml/min). TGA krivulje prikazane su kao postotak gubitka težine na Y-osi (TGA postotak) i temperature (stupnjevi) na slici 2b.

Kultura stanica.Utjecaj CP na preživljavanje matičnih stanica ljudske zubne pulpe (HDPSC). Dentinski diskovi dobiveni su iz ukupno 34 ljudska zuba. Zubi su presječeni poprečno na srednjoj koronalnoj razini kako bi se dobila standardizirana debljina dentina uzoraka diska debljine 3 mm pomoću dijamantnog mikrotoma (STRUERS, ACCUTOM-50, STRUERS LTD., SOLIHULL, WEST MIDLANDS, UK). Diskovi su uronjeni u 37-postotnu fosfornu kiselinu u zvučnoj kupelji do 15 s kako bi se uklonio mrljasti sloj, nakon čega su uslijedile 2 minute ispiranja u destiliranoj vodi17. Vertikalna orijentacija dentinskih tubula i njihovo otvaranje provjereni su skenirajućom elektronskom mikroskopijom (FLEXSEM 1000. HITACHI HIGH TECHNOLOGIES; TORONTO, KANADA) na odabranim diskovima. Ploče s jažicama stanične kulture modificirane su s transwell umetkom (THERMO FISHER SCIENTIFIC, WHITBY, KANADA) kako bi poduprle 3 mm debele dentinske diskove promjera<4 mm (Fig. 3). Gaps between the transwell insert walls, and the edges of the dentin discs were sealed using a flowable composite resin material (FILTEK SUPREME ULTRA FLOWABLE RESTORATIVE, 3M ESPE) (Fig. 3a) to ensure that any CP gel deposited on top of the dentin disc could only perfuse through the dentin tubules (Fig. 3b) Additionally, we ensured that the cell growth medium was in direct contact with the dentin disc's underside to mimic the partial pressure in the dentinal tubules. HDPSCs (LONZA WALKERSVILLE, INC. MD 21793-0127 USA) were cultured in the dental pulp stem cell (DPSC) basal medium supplemented with dental pulp stem cell growth supplement (DPSCGS), 50 ml; l-glutamine, 10.0 ml; Ascorbic Acid, 5.0 ml; Gentamicin/Amphotericin-B (GA) (LONZA WALKERSVILLE, INC. MD 21793-0127 USA). Cells from the 4th passage were used with a minimum of 50,000 cells present in each well of the 12 well-plate the day before the treatment. Te HDPSCs sub-cultures and dentin discs were randomly assigned to three treatment groups: exposure to 5%, 10%, 35% CP gel, and control. For the treatment groups, a drop of activated CP gel (using a drop of artificial saliva) at relevant concentrations was directly applied on top of the dentin disc mounted in the transwell insert (Fig. 3a) to simulate the exposure of the HPSCs to the whitening treatment. Artificial saliva was used for the control group. A time assay of HDPSCs survivability was performed for up to 4 h by evaluating the change in cell shape and morphology optically, as presented in Fig. 4a. In Addition, the ratio of live/dead cells at each time point was obtained by hemocytometry after trypan blue staining.

does cistanche work

Utjecaj H2O2 na preživljavanje stanica fibroblasta ljudske gingive (HGFC). HGFC (SCINCELL RESEARCH LAB ORATORIES, CARLSBAD, CA 92008, SJEDINJENE DRŽAVE) uzgajani su u Dulbeccovom modificiranom Eagle Medijumu (DMEM) (SIGMA CHEMICAL CO., ST. LOUIS, MO) s dodatkom 10 posto fetalnog telećeg seruma (GIBCO, GRAND ISLAND, NY) i 10 posto antibiotika na 37 stupnjeva (ISOTEMP FISHER SCIENTIFIC, PITTSBURGH, PA). Stanice iz 4. prolaza korištene su s najmanje 50 000 stanica prisutnih u svakoj jažici ploče (12 jažica) dan prije tretmana. Uzgajani HGFC izravno su bili izloženi 5-postotnoj otopini H2O2, kao što je prikazano na slici 5a-i. Provedeno je vremensko ispitivanje preživljavanja HGFC-a do 4 sata optičkom procjenom promjene oblika i morfologije stanica kao što je prikazano na slikama 5a-ii, iii, iv, v & vi. Osim toga, omjer živih/mrtvih stanica u svakoj vremenskoj točki (30 min, 1 h, 2 h i 4 h) dobiven je hemocitometrijom nakon bojenja tripan plavim.

Statistička analiza.Za analizu omjera cakline i proteina (težine), provedena je pilot studija (2 skupine – 4 ponavljanja) za procjenu snage. Snaga za studiju postavljena je na 80 s p-vrijednošću od 0,05, a podaci su analizirani 2-stranim testom uspoređujući 2 neovisne srednje vrijednosti s nejednakim varijancama i poznatim standardima odstupanja pomoću Stata 14 (StataCorp LP, Texas, SAD). Čimbenik kliničke važnosti za ovu studiju postavljen je kao 10-postotna promjena srednje vrijednosti. Procijenjena veličina uzorka dobivena je t-testom Satterthwaitea Welcha s nultom hipotezom opisanom kao jednake srednje vrijednosti. Nakon dovršetka prikupljanja podataka o ispitivanju s pogonom, prvo je korištena deskriptivna statistička analiza kako bi se utvrdila srednja vrijednost i standardna devijacija za svaku skupinu i grafički prikazali podaci kao okvirni prikazi. Srednje vrijednosti grupe uzorka su zatim uspoređene korištenjem jednosmjerne ANOVE s Bonferronijevom posthoc korekcijom. Razina značajnosti za ovu usporedbu postavljena je na str<0.001. SPSS software (IBM SPSS STATISTICS 24, IBM CORP.) was used for these analyses.

Za kulturu stanica:Sve stanične kulture su provedene u eksperimentalnim triplikatima iz matične baze. U svakoj vremenskoj točki, frakcija živih i mrtvih stanica je normalizirana na postotak (postotak) od ukupno prebrojanih stanica. Postotna živa ćelija opremljena je eksponencijalnim smanjenjem za izračunavanje vremenske konstante 1/e pomoću Origin Pro 9.0 (ORIGINCORP, SAD).

Odricanje od odgovornosti autora.Autori su namjerno odlučili ne otkriti marku ili proizvođača komercijalno dostupnih proizvoda korištenih u ovoj studiji koja je provedena u našem prethodnom podnesku15.

cistanche and tongkat ali reddit

cistanche gnc

Rezultati

Propusnost cakline.Slika 2b prikazuje tipičnu krivulju termogravimetrije (TGA) promjene težine s temperaturom za odabrani uzorak cakline. Ta je promjena jasnije prikazana na DrTGA krivulji (1. derivacija TGA krivulje), predstavljajući najveću stopu promjene mase na T=464 stupnju. Skupina koja je primala 16 posto CP pokazala je organsku varijaciju od 4.0 posto, dok je skupina koja je primala 5 posto CP pokazala varijaciju od 5,4 posto (slika 2c) bez značajne razlike. Obje terapijske skupine pokazale su značajno niže (str<0.001) enamel protein content by weight following CP treatment when compared to the control group (~50% on average).

HDPSC-ovi.Nakon 240 min, HDPSC-i, izloženi svim tretmanima CP-om, pokazali su nenativni stanični morfološki izgled (okrugli) u usporedbi s kontrolom (bez izlaganja CP-u). Smrt stanica potvrđena je hemocitometrijskim brojanjem koristeći tripan plavu boju (slika 4a). Slika 4b prikazuje prilagođene grafikone postotka živih/mrtvih stanica tijekom vremena za kontrolnu skupinu (bez izloženosti CP) (Slika 4b-i) i tri koncentracije CP gela (Slika 4b-ii, iii & iv). Došlo je do eksponencijalnog smanjenja broja preostalih živih stanica tijekom vremena za tri tretirane skupine. Iscrtavanjem postotka živih/mrtvih stanica tijekom vremena (Slika 4b), moguće je uklopiti eksponencijalni pad u odnosu na populaciju preostalih živih stanica. Nakon izračuna konstante opadanja (1/e ili 70 posto pada u izvornoj populaciji) za svaku od skupina, čini se da su i T10 postotni CP i T35 postotni CP blizu jedan drugoga (27,9±12,5) min i ( 28,3,6±4,3) min (sl. 4b-iii i iv), redom. Nasuprot tome, T5 posto CP=(203,4±246,0) min (Sl. 4b-ii).

HGFC-ovi.HGFC počinju gubiti svoje morfološke izglede nakon 30 minuta, a stanična smrt je potvrđena hemocitometrijskim brojanjem koristeći tripan plavu boju. Više od 95 posto stanične smrti može se zabilježiti nakon 120 minuta izlaganja H2O2. Te 1/e vremenska konstanta javlja se pri TH2O2=(24,6±4,6) min (Sl. 5b).

Rasprava

Propusnost cakline.Caklina se prva susreće sa sredstvima za izbjeljivanje. Međutim, caklina se sastoji od > 98 posto mineralne faze hidroksiapatita, a < 2 posto cakline sastoji se od proteina (90 posto amelogenina, 10 posto emajlina i ameloblastina). Ovi proteini tvore caklinski omotač oko caklinskih šipki u zrelim zubima18. Svaki gubitak ovih proteina povećao bi propusnost cakline i pospješio prodor vanjskih reagensa19. Naši rezultati pokazuju da je protein cakline osjetljiv na oksidativnu degradaciju od nusproizvoda reakcije razgradnje CP. Glavna promjena mase (430–500 stupnjeva) odražava oksidativnu degradaciju organskog sadržaja cakline ostavljajući samo mineralni sadržaj cakline u lončiću20. Niska koncentracija CP (5 posto) dovoljna je za promjenu sadržaja proteina u caklini. Pokazalo se da sredstva za izbjeljivanje na bazi peroksida izazivaju promjene površinske teksture i morfologije cakline8,21. Ferreira i sur. pokazalo je da je 35 posto vodikovog peroksida (HP) utjecalo na morfologiju cakline, stvarajući poroznosti, udubljenja i površinske nepravilnosti u različitim stupnjevima 22. CP je specifično inducirao jednoliku eroziju površinske i ispod površine cakline nalik na jetkanje zbog otapanja minerala i dekalcifikacije23. Također može uzrokovati smanjenje tvrdoće cakline i veću hrapavost cakline 24. Studija putem elektronske mikroskopije primijetila je da je tretman izbjeljivanja CP ili HP izazvao različite površinske promjene, uključujući smanjenje prizmatskog sloja, demineralizaciju caklinskih prizmi i veću poroznost unutar i između caklinskih prizmi25. Naš je pristup produžio ovo financiranje jer smo potvrdili da je sadržaj proteina u caklini također značajno smanjen, potvrđujući otvaranje međuprizmatskih prostora koji bi djelovali kao kanali za prodor nusproizvoda reakcija razgradnje CP u unutarnji dio zuba, uključujući pulpa. Međutim, kako promjene u sastavu cakline mogu biti reverzibilne in vivo, ova promjena u sastavu cakline nije konačna.

cistanche supplement review

Učinak izbjeljivanja zubi na HDPSC i HGFC. Dentalna preosjetljivost javlja se u oko dvije trećine pacijenata tijekom vitalnog izbjeljivanja26. To se uglavnom može pripisati difuziji peroksida u caklinu i dentin, što dovodi do dehidracije i kasnijeg kretanja tekućine u dentinskim tubulima, što stimulira živčane završetke, što dovodi do osjetljivosti14. Pretjerano izlaganje nusproduktima koji se oslobađaju iz gela za izbjeljivanje većini stanica uzrokuje oksidativni stres27. Povećanje razine ROS-a (reaktivne kisikove vrste) uzrokuje štetne učinke na nekoliko staničnih komponenti, uključujući peroksidaciju lipida, oksidativne promjene proteina i oštećenje stanica DNA28. Konstante raspadanja mogu se koristiti za označavanje kada kultura više nije održiva. Zanimljivo je da je i 10-postotna i 35-postotna izloženost CP-u utjecala na kulturu stanica na sličan način, dok 5-postotna izloženost CP-u utječe na kulturu u mnogo manjoj mjeri, što je dokazano širom pogreškom na konstantnoj vrijednosti. Prevođenje ovih nalaza in vivo može rezultirati djelomičnim ublažavanjem ove brze stanične smrti zbog pozitivnog pritiska pulpe, zubne tekućine i inherentne obrane stanice od oksidativnog stresa. Jedno od ograničenja naše studije nije bilo istraživanje staničnog oporavka i imunološkog odgovora domaćina nakon izlaganja slobodnim radikalima izvedenim iz H2O2-.

HDPSC-ovi.Poznato je da HDPSC predstavljaju heterogenu kulturu iz tkiva pulpe, uključujući populaciju mezenhimalnih matičnih stanica29,30. Odlučili smo upotrijebiti ovu heterogenu kulturu za ovo istraživanje jer se mezenhimalne matične stanice regrutiraju kao prekursori novih stanica sličnih odontoblastima, odgovornih za regeneraciju kompleksa dentin-pulpa nakon smrtonosnog oštećenja odontoblasta kao što se i očekivalo nakon izlaganja ROS31. Odontoblasti su također uključeni u inicijaciju, razvoj i održavanje upalnog/imunološkog odgovora pulpe, predstavljajući prvu obrambenu liniju domaćina 32. Stoga je bitno procijeniti mogućnost preživljavanja HDPSC-a u vrlo štetnom okruženju. Naši rezultati pokazuju da i 10-postotna i 35-postotna izloženost CP gela dentinskom disku utječu na HDPSC na isti način (na temelju vremenske konstante) kao da su stanice bile izložene izravno 5-postotnom H2O2 kao što je to učinjeno za HGFC. Dentinski disk (debljine 3 mm) ne može spriječiti prodiranje nusproizvoda reakcija razgradnje CP-a da dođu do stanične kulture kada koncentracija CP-a prijeđe 5 posto CP-a, kao što je pokazano mjerenjem vitalnosti stanica. Ovo je u skladu s našom prethodnom in vitro studijom15, koja je dokazala da čak i uz nisku koncentraciju (5 posto CP) sredstva za izbjeljivanje, peroksid i slobodni radikali mogu difundirati kroz dentin u tkivo pulpe, uzrokujući degradaciju kolagena i smanjenje organskog dentina komponente (amid I i amid III). Svi protokoli izbjeljivanja zubi procijenjeni u ovoj studiji rezultirali su trans-caklinskom i trans-dentinskom difuzijom peroksida, izravno povezanom s koncentracijom gela za izbjeljivanje zubi i vremenom nanošenja na dentin. Međutim, stanice pulpe iz ljudskog tkiva i dalje su bile vrlo osjetljive na sve protokole izbjeljivanja testirane u ovom istraživanju, iako se odgovor na 5 posto razlikovao od 10 posto i 35 posto. Prethodne studije pokazale su oksidativni stres stanica pulpe izazvan H2O2 na način ovisan o vremenu/koncentraciji10,33. Kod vitalnih zuba oksidativni stres uzrokuje upalni odgovor pulpe izravno povezan s debljinom cakline i dentina izbijeljenih zuba31,34. Studija koju su proveli Sato i sur. pokazalo je da in-vivo oksidativni stres generiran 35-postotnim -H2O2 gelom u tkivu pulpe mladih ljudskih pretkutnjaka povećava aktivnost metaloproteinaza i cistein katepsina B, koji oboje igraju ključnu ulogu u razgradnji proteinskog matriksa. Prema podacima iz ove studije, ove negativne nuspojave mogu se minimizirati skraćivanjem vremena kontakta s caklinom ili dentinom ili smanjenjem koncentracije H2O2 u sredstvima za izbjeljivanje zubi. Nekoliko kliničkih ispitivanja pokazalo je da gelovi za izbjeljivanje zubi s koncentracijom H2O2 (15-20 posto) naneseni na caklinu tijekom 45-60 minuta mogu potaknuti značajnu promjenu boje uzrokovanu visokom koncentracijom H2O2 gela od 35 posto. U tim studijama, incidencija osjetljivosti zuba kretala se od 24 do 78 posto, a smatra se blagom u ozbiljnosti od 35 do 37 posto. Štoviše, novija klinička studija otkrila je da je učinkovitost izbjeljivanja gelova s niskim 5 posto CP jednako učinkovita kao i onih koji sadrže 10 posto CP38. Dakle, smanjenjem koncentracije peroksida i vremena izlaganja, moguće je provesti učinkovit i manje agresivan protokol kućnog izbjeljivanja zubi. Međutim, potrebne su in vivo studije na vitalnim ljudskim zubima kako bi se procijenila učinkovitost izbjeljivanja zuba i reakcije pulpe nakon primjene protokola izbjeljivanja zubi procijenjenih u ovoj studiji. Iako naša studija nije imala namjeru ponoviti 'in-vivo" model zuba, proizveli smo jednostavan model perfuzije koji olakšava testiranje utjecaja pristupa izbjeljivanju na zubne stanice kako bi se procijenila njihova kratkoročna održivost.

HGFC-ovi.Ljudski gingivalni fibroblasti igraju bitnu ulogu u strukturi tkiva, funkciji i imunološkoj obrani domaćina39. Neka izvješća pokazuju da je H2O2 uzrokovao iritaciju, ulceraciju, peckanje i određene štetne učinke na desni40,41. Zabilježeno je da vodikov peroksid potiče aktivaciju PKC i ERK 1/2 i smanjuje vitalnost stanica42. Studija in vitro pokazala je da vodik korišten u koncentracijama od 10 do 200 mM potiče apoptozu. Karakteristični događaji apoptoze kao što su morfološke promjene, uključujući kondenzaciju kromatina i fragmentaciju jezgre i DNA, koji se smatraju zaštitnim znakom stanica koje prolaze kroz apoptozu, otkriveni su u vodikovom peroksidu HGFCs43. U ovoj studiji otkrili smo da 5 posto H2O2 smanjuje održivost HGFC-a. Neposredni utjecaj H2O2 na vitalnost fibroblasta gingive ne reproducira izravno događaje u komori pulpe, ali ukazuje zašto može doći do iritacije gingive i podržava ograničavanje izravnog kontakta s gingivom44. Zabilježeno je poništenje ovog učinka na gingivu nakon 2 tjedna s 10 i 16 posto CP45.

Zaključci

Unutar ograničenja ovog in-vitro modela, možemo zaključiti da 5 posto i 16 posto CP izaziva 50 postotno smanjenje postotka težine organskog sadržaja u caklini, čineći je poroznijom i osjetljivijom na difuziju peroksida u dentin i pulpu. tkivo. Štoviše, kućno izbjeljivanje zubi visokom koncentracijom i dugim vremenom primjene (35 postotni CP gel primijenjen tijekom 4 sata) može proizvesti intenzivan oksidativni stres i na gingivalnim fibroblastima i na stanicama pulpe, povezan s ozbiljnim smanjenjem vitalnosti stanica. Prema našim podacima, uporaba nižih koncentracija CP (5 posto) bila bi manje štetna za zubne stanice i stoga bi trebala biti preporučena koncentracija. Ipak, krajnji korisnici ponekad preferiraju korištenje povećanih koncentracija CP kako bi vidjeli trenutačni učinak izbjeljivanja na zubima. Naša je studija pokazala ekstremnu nuspojavu izloženosti CP-u zubnim stanicama, što dovodi do brze stanične smrti pri korištenju tako visokih koncentracija CP-a. Kao rezultat toga, potrebno je pronaći kompromis između koncentracije korištenog CP-a, vremena izloženosti, željenih ishoda za pacijente i, konačno, doživljenih nuspojava. Ovaj kompromis treba ispitati in vivo prije puštanja na tržište, a pacijente treba upoznati s utjecajem takvog postupka na njihovo oralno zdravlje.

maca ginseng cistanche

Primljeno: 16. svibnja 2021.; Prihvaćeno: 12. srpnja 2021

Reference

1. Strassler, HE, Scherer, W. & Calamia, JR Sredstva za izbjeljivanje karbamid peroksid kod kuće. Ažuriranje. NY State Dent. J. 58, 30–35 (1992).

2. Dahl, J. & Pallesen, U. Izbjeljivanje zuba – kritički osvrt na biološke aspekte. krit. Rev. Oral Biol. Med. 14, 292–304 (2003).

3. Gökay, O., Müjdeci, A. & Algın, E. Prodiranje peroksida u pulpu iz trakica za izbjeljivanje. J. Endod. 30, 887–889 (2004).

4. Camargo, SEA, Valera, MC, Camargo, CHR, Mancini, MNG & Menezes, MM Prodiranje 38 posto vodikovog peroksida u komoru pulpe kod goveđih i ljudskih zuba podvrgnutih uredskoj tehnici izbjeljivanja. J. Endod. 33, 1074–1077 (2007).

5. Toledano, M., Yamauti, M., Osorio, E. & Osorio, R. Sredstva za izbjeljivanje povećavaju razgradnju kolagena u dentinu posredovanu metaloproteinazama. J. Endod. 37, 1668–1672.

6. Alkahtani, R., Stone, S., German, M. & Waterhouse, P. Prikaz izbjeljivanja zuba. J. Dent. 100, 103423 (2020).

7. Park, HJ i sur. Promjene na goveđoj caklini nakon tretmana sredstvom za izbjeljivanje s 30 posto vodikovim peroksidom. Utiskivati. Mater. J. 23, 517–521.

8. Elfallah, HM, Bertassoni, LE, Charadram, N., Rathsam, C. & Swain, MV Učinak sredstava za izbjeljivanje zuba na sadržaj proteina i mehanička svojstva zubne cakline. Acta Biomater. 20, 120–128.

9. Okonogi, S. i sur. Povećanje stabilnosti i aktivnosti izbjeljivanja zuba karbamid peroksida pomoću elektrospredenog nanovlaknastog filma. Pharmaceuticals 13, 381 (2020).

10. Min, KS i sur. Vodikov peroksid inducira hem oksigenazu-1 i mRNA dentin sialofosfoproteina u stanicama ljudske pulpe. J. Endod. 34, 983–989.

11. Goldberg, M. & Smith, AJ Stanice i izvanstanični matriksi dentina i pulpe: biološka osnova za popravak i tkivni inženjering. krit. Rev. Oral Biol. Med. 15, 13–27.

12. Costa, CA, Riehl, H., Kina, JF, Sacono, NT & Hebling, J. Reakcije ljudske pulpe na izbjeljivanje zuba u ordinaciji. Oral Surg. Oral Med. Oralni Pathol. Oralni radiol. Endod. 109, e59-64.

13. Kugel, G., Papathanasiou, A., Williams, AJ 3rd., Anderson, C. & Ferreira, S. Klinička procjena kemijskih i svjetlosno aktiviranih sustava za izbjeljivanje zubi. Compend. Nastavi Educ. Utiskivati. 27, 54–62 (2006).

14. Goldberg, M., Grootveld, M. & Lynch, E. Neželjeni i štetni učinci proizvoda za izbjeljivanje zubi: pregled. Clin. Usmena istraga. 14, 1–10.

15. Redha, O. i sur. Utjecaj izbjeljivača karbamid peroksida na dentinski kolagen. J. Dent. Res. 98, 443–449 (2019).

16. McKnight-Hanes, C. & Whitford, GM Otpuštanje fluorida iz tri staklenoionomerna materijala i učinci lakiranja sa ili bez završne obrade. Caries Res. 26, 345-350 (1992).

17. Jacques, P. & Hebling, J. Učinak regeneratora dentina na mikrotenzilnu čvrstoću veze konvencionalnog i samojetkajućeg temeljnog adhezivnog sustava. Utiskivati. Mater. 21, 103–109 (2005).

18. Nanci, A. Ten Cateova oralna histologija-e-knjiga: razvoj, struktura i funkcija (Elsevier Health Sciences, 2017.).

19. Schiavoni, RJ i sur. Utjecaj sredstava za izbjeljivanje na propusnost cakline. Am. J. Dent. 19, 313–316 (2006).

20. Holager, J. Termogravimetrijski pregled cakline i dentina. J. Dent. Res. 49, 546-548 (1970).

21. Gjorgievska, E. & Nicholson, JW Prevencija demineralizacije cakline nakon izbjeljivanja zuba bioaktivnim staklom ugrađenim u pastu za zube. Aust. Utiskivati. J. 56, 193–200 (2011).

22. Ferreira, SDS et al. Učinak terapije fluoridom na morfologiju izbijeljene ljudske zubne cakline. Microsc. Res. tehn. 74, 512–516 (2011).

23. Ushigome, T. et al. Utjecaj tretmana peroksidom na površinu goveđe cakline - Analiza presjeka. Utiskivati. Mater. J. 28, 315–323 (2009).

24. Ribeiro, JS et al. Novi gelovi za izbjeljivanje zuba bez peroksida u ordinaciji: učinkovitost izbjeljivanja, promjene površine cakline i održivost stanica. Sci. Rep. 10, 1–8 (2020).

25. Fu, B., Hoth-Hannig, W. & Hannig, M. Učinci izbjeljivanja zuba na mikro- i nano-morfološke promjene površine cakline. Am. J. Dent. 20, 35–40 (2007).

26. AM Sulieman, M. Pregled tehnika izbjeljivanja zubi: kemija, sigurnost i učinkovitost. Parodontologija. 48, 148–169 (2008).

27. Kawamoto, K. & Tsujimoto, Y. Učinci hidroksilnog radikala i vodikovog peroksida na izbjeljivanje zuba. J. Endod. 30, 45–50 (2004).

28. Shackelford, RE, Kaufmann, WK & Paules, RS Oksidativni stres i funkcija kontrolne točke staničnog ciklusa. Slobodan Radić. Biol. Med. 28, 1387-1404 (2000).

29. Kerkis, I. et al. Izolacija i karakterizacija populacije nezrelih matičnih stanica zubne pulpe koje izražavaju OCT-4 i druge markere embrionalnih matičnih stanica. Stanice Tkivo Organi 184, 105–116 (2006).

30. Lizier, NF i sur. Povećanje matičnih stanica zubne pulpe izoliranih iz više niša. PLoS ONE 7, e39885 (2012).

31. Goldberg, M. i sur. Utjecaj bioaktivnih molekula na poticanje popravka i regeneracije zuba dio je restaurativne stomatologije. Utiskivati. Clin. 50, 277–298 (2006).

32. Farges, JC i sur. Odontoblasti u imunološkom odgovoru zubne pulpe. J. Exp. Zool. B Mol. Dev. Evol. 312, 425–436 (2009).

33. Matsui, S., Takahashi, C., Tsujimoto, Y. & Matsushima, K. Stimulativni učinci reaktivnih vrsta kisika niske koncentracije na sposobnost kalcifikacije stanica ljudske zubne pulpe. J. Endod. 35, 67–72 (2009).

34. de Souza Costa, CA, Riehl, H., Kina, JF, Sacono, NT & Hebling, J. Reakcije ljudske pulpe na izbjeljivanje zuba u ordinaciji. Oral Surg. Oral Med. Oralni Pathol. Oralni radiol. Endodontol. 109, e59-e64 (2010).

35. Moncada, G. i sur. Učinci svjetlosne aktivacije, koncentracije sredstva i debljine zuba na osjetljivost zuba nakon izbjeljivanja. Oper. Utiskivati. 38, 467–476 (2013).

36. Reis, A., Kossatz, S., Martins, G. i Loguercio, A. Učinkovitost učinka koncentracija gela za izbjeljivanje u ordinaciji na osjetljivost zuba: randomizirano kliničko ispitivanje. Oper. Utiskivati. 38, 386–393 (2013).

37. Özcan, M., Abdin, S. & Sipahi, C. Osjetljivost zuba izazvana izbjeljivanjem: povećavaju li postojeće bore na caklini osjetljivost? Klinička studija. Odontologija 102, 197–202 (2014).

38. Hyland, BW i sur. Nova trokomponentna formulacija za učinkovito izbjeljivanje zubi (Carbamide Plus). Clin. Usmena istraga. 19, 1395–1404 (2015).

39. Hiroshima, Y. et al. Regulacija ekspresije antimikrobnih peptida u ljudskim gingivalnim keratinocitima pomoću interleukina-1. Arh. Oral Biol. 56, 761–767 (2011).

40. Ara, T. i sur. Ljudski gingivalni fibroblasti kritični su u održavanju upale kod parodontne bolesti. J. Periodontal Res. 44, 21–27

(2009).

41. Curtis, JW Jr. et al. Procjena učinaka 10 posto karbamid peroksida na oralna meka tkiva. J. Am. Utiskivati. Izv. 127, 1218-1223 (1996).

42. Gutiérrez-Venegas, G., Arreguín-Cano, JA, Arroyo-Cruz, R., Villeda-Navarro, M. & Méndez-Mejía, JA Aktivacija ERK1/2 protein kinazom C- kao odgovor na vodikov peroksid- inducirana stanična smrt u fibroblastima ljudske gingive. Toxicol. In Vitro 24, 319-326 (2010).

43. Gutiérrez-Venegas, G., Guadarrama-Solís, A., Muñoz-Seca, C. & Arreguín-Cano, JA Apoptoza izazvana vodikovim peroksidom u ljudskim gingivalnim fbroblastima. Int. J. Clin. Exp. Pathol. 8, 15563 (2015).

44. Ziebolz, D., Helms, K., Hannig, C. & Attin, T. Učinkovitost i oralne nuspojave dva visoko koncentrirana sustava za izbjeljivanje na bazi pladnja. Clin. Oral Invest. 11, 267–275 (2007).

45. Lewis, NJ Te Sof Učinci na tkiva i klinička učinkovitost gelova za izbjeljivanje zubi s karbamid peroksidom: magistarska teza dvostruko slijepog randomiziranog kontroliranog kliničkog ispitivanja, (University College London (UCL), 2007.).

Priznanja

Autori se zahvaljuju i zahvaljuju vladi Kuvajta na podršci ovom istraživanju.

Autorski prilozi

OR je zamislio predstavljenu ideju pridonio koncepciji, osmislio i izveo pokuse, prikupljanje podataka, analizu, interpretaciju te izradio rukopis. MM na koncepciju, dizajn, prikupljanje podataka, analizu i interpretaciju. SN za prikupljanje podataka. DOS, ML, BH i MO doprinijeli su interpretaciji podataka. Konačno, AM i LB pridonijeli su koncepciji, dizajnu, analizi podataka i interpretaciji te su nadgledali rukopis. Svi su autori kritički revidirali rukopis prije predaje. Svi autori dali su konačna odobrenja i prihvatili odgovornost za sve aspekte rada.